版本號：08152012
MaxiDNA Purification Kit
大量 DNA 產物純化試劑盒
目錄號： K0517
保 存： 室溫
組分說明
Cat.No. K0517
KitSize 50
BufferPB 60ml
BufferPS 15ml
BufferPW（concentrate） 10ml
BufferEB 10ml
SpinColumnDL 50
CollectionTube（2ml） 50
產品簡介
本試劑盒采用新型硅基質膜技術，通過快速簡單的結合-洗滌-洗脫步驟即可從大量的 PCR 產物或酶反應液（酶切，連接，探針標記等）中純化 50 bp-50 kb 的 DNA 片段，純化過程中可有效去除引物、寡核苷酸、酶等雜質，從而獲得高純度，高濃度，完整性好的 DNA 片段，回收率高達 90%。本試劑盒回收純化的 DNA 可直接用于測序、連接和轉化、標記、體外轉錄等分子生物學實驗。
注意事項
1.本試劑盒可無選擇性的回收溶液中所有 DNA 片段，如需選擇性回收特定片段，同時去除其他不同大小片段，請選擇我公司的膠回收試劑盒（K0524, 加 K2302，K0518 或 K0526）。
2.第--次使用前應按照試劑瓶標簽的說明在BufferPW中加入無水乙醇。
3.使用前請檢查BufferPB是否出現結晶或者沉淀，如有結晶或者沉淀現象，可在37℃水浴幾分鐘，即可恢復澄清。
4． 回收率與初始DNA量和洗脫體積有關。
5． 所有離心步驟均為使用臺式離心機在室溫下離心。
自備：無水乙醇，離心管
操作步驟
1.估計DNA反應液的體積，加入5倍體積的Buffer PB，充分混勻（如DNA反應體系為100µl，則加入500µlBufferPB，無需去除石蠟油或礦物油）。
注意：在加入BufferPB后檢測溶液的pH值，若pH值大于7.5，可向其中加入10-30 μl 的3M醋酸鈉（pH5.0），從而將pH值調到5-7。
2.柱平衡：向已裝入收集管（CollectionTube）中的吸附柱（SpinColumnDL）中加入200 μl Buffer PS，12,000rpm（~13,400×g）離心2分鐘，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱重新放回收集管中。
3.將步驟1中所得溶液加入到已裝入收集管的吸附柱中，室溫放置2分鐘，12,000rpm離心1分鐘，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱放回收集管中。
注意：吸附柱容積為700µl，若樣品體積大于700µl可分批加入 。
4. 向吸附柱中加入650 µl Buffer PW（使用前請先檢查是否已加入無水乙醇），12,000rpm離心1分鐘，倒掉收集管中的廢液，
5. 將吸附柱放回收集管中。
6.注意：如果純化的DNA用于鹽敏感實驗（例如平末端連接實驗或直接測序），建議加入BufferPW后靜置2-5分鐘再離心。12,000rpm離心2分鐘，倒掉收集管中的廢液。將吸附柱置于室溫數分鐘，以*晾干。
注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的乙醇去除，乙醇的殘留會影響后續的酶促反應（酶切、PCR等）。為確保下游實驗不受殘留乙醇的影響，建議將吸附柱開蓋，置于室溫放置數分鐘，以*晾干吸附材料中殘余的乙醇。
7. 將吸附柱放到一個新離心管（自備）中，向吸附膜中間位置懸空滴加100 µl Buffer EB（pH 8.5），室溫放置2分鐘。
8. 12,000rpm離心1分鐘，收集DNA溶液。-20℃保存DNA。
注意：1）洗脫液的pH值對于洗脫效率有很大影響。若用水做洗脫液，應保證其pH值在7.0-8.5之間（可以用NaOH將水的pH值調到此范圍）。
2）為了提高DNA的回收量，可將離心得到的溶液重新滴加到吸附柱中，重復步驟6。
3）洗脫體積不應小于50μl，體積過少會影響回收率。
4）如果使用TE洗脫，需要考慮其中含有的EDTA是否會影響后續的酶促應。
5）回收大于10kb的DNA片段時，BufferEB應在50℃水浴中預熱，適當延長吸附和洗脫時間，可增加回收效率。
實驗代做服務：
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