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pUC-T TA快速連接試劑盒（含載體，連接酶）說明書

pUC-T Quick Ligation Kit

pUC-T TA快速連接試劑盒（含載體，連接酶）

目錄號：YJ2591

保存條件：-20℃保存。

組分說明

                Cat. No.                            YJ2591

                Size                                  20次

                pUC-T（50 ng/μl）                       20 μl

                Conctrol Insert (50 ng/μl)            10 μl

                Quick T4 DNA Ligase                   20 μl

                2×Quick Ligation Reaction Buffer     120 μl

              本產品僅供科研使用，請勿用于臨床診斷及其他用途  

產品簡介

　　pUC-T TA載體是一種克隆PCR產物的載體，它是由pUC18載體在EcoR V

酶切位點處切開，在兩側的3′端添加T而成。由于大部分耐熱聚合酶反應時都會在 PCR

產物的3′端添加一個A，它可以與pUC-T 3′端的T互補連接，因此可大大提高PCR產物的連接和克隆效率。

　試劑盒中配備率的T4 DNA Ligase和為快速DNA連接優化的2×Quick Ligation 

Reaction Buffer。連接效率相當于用T4 DNA Ligase 進行常規連接1小時。帶有插入片

段的重組子可根據α互補原理，進行藍白斑篩選，判斷載體中有無外源基因的插入。克

隆后可以用BcaBEST Sequencing Primers和 M13通用引物對PCR產物進行測序。

注意事項

1．Insert DNA 要求

   1）連接使用的PCR片段3’末端應帶有“A”尾。有些高保真DNA聚合酶，如我公司的  Pfu擴增的PCR產物是平滑末端，可使用加A試劑盒加上A尾后，再進行T載體克隆。

   2）PCR產物建議進行切膠回收純化后再進行T載體克隆，以免PCR產物中的非特異片

   段或殘存引物等雜質影響。推薦使用  YJ2302/YJ0524/YJ0518 快速瓊脂糖凝膠

   DNA回收試劑盒。

2．連接反應要求

   1）本試劑盒能使大多數連接反應在25℃條件下5分鐘甚至更短時間內達到反應終點，

   增加反應時間反應效率不會增強。如用快速連接反應  1小時后，轉化效率會明顯降

   低；如25℃快速連接反應過約夜，則轉化效率會下降到75%。

   2）2×Quick Ligation Reaction Buffer含有ATP，使用前置于冰上使其融化后充分混

   勻，建議初次使用分裝成小管凍存，避免其反復凍融影響DNA連接效率。

   3）由于T4 DNA Ligase中含有甘油，比較粘稠容易掛壁，建議使用之前短暫離心將

   液體收集到管底，取樣時槍頭盡量不要深入液面太深，以免粘在槍頭上造成損失。

   4）如快速連接產物用于電轉，因快速連接反應體系中的PEG會影響電轉效率，建議

   使用離心柱將連接產物進行DNA純化（如YJ2301快速DNA產物純化試劑盒）后再

   進行電轉。

3．感受態細胞要求

   建議使用的熱擊轉化感受態細胞，這樣才可能得到比較理想的陽性克隆，如需  

   進行藍白篩選，宿主細胞必須具有正確的基因型（F′編碼的【lacZ ΔM15】）產生ω片

   段，才能與載體DNA產生的LacZ  α多肽結合，表現出β-半乳糖苷酶活性（α互補）。

   pUC-T  TA載體以pUC18載體為基礎構建而成，因此，適合pUC18載體的感受態細胞都可以使用。推薦使用本公司YJ0807 *0感受態細胞、YJ0808 DH5α感受態細胞。

4．陽性克隆篩選

   陽性DNA-片段成功插入至pUC-T Vector中后，一般情況下β-半乳糖苷酶的表達將受

   到破壞，重組克隆體在含有X-Gal、IPTG、Amp的LB固體培養基上培養時將顯示白 

   色菌落。但有時比較短的DNA-片段插入載體時，基因的讀碼框有可能正好與LacZ的 

   讀碼框相吻合，克隆體也會顯示藍色菌落。

5．陽性對照

   為了確認實驗操作的正確性，以及實驗試劑的有效性，我們建議使用本試劑盒中配

   備的Control Insert（750 bp）進行陽性對照實驗。

使用方法

1．按以下體系配制反應液：

成分                               反應體系          對照體系

pUC-T                                 1 μl          1 μl

DNA插入片段   *                    0.1 -0.3 pmol      --

Control Insert DNA                       --           1 μl

2×Quick Ligation Reaction  Buffer     5 μl          5 μl

Quick T4 DNA Ligase                    1 μl          1 μl

RNase-Free Water                      補足至 10 μl     補足至 10 μl

     *Insert DNA的使用量：在進行克隆時，Vector DNA和Insert DNA的摩爾比一般為：1:2-1:10，

     可根據實驗情況選擇適當的Vector DNA和Insert DNA的摩爾數比。Insert DNA的使用量=nmol數×660×Insert DNA bp數。本載體1 ml（50  ng）的摩爾數約為0.03 pmol。

2．輕輕混合，短暫離心。25℃反應5分鐘。

   注意：反應時間不要超過15分鐘，否則會降低連接效率。

3．反應結束后，將DNA連接產物存放于0-4℃，而后進行轉化實驗；也可將  DNA連接

   產物置于-20℃保存。

   注意：勿進行加熱失活反應。

4．將連接產物加入50 μl感受態細胞中（將感受態細胞置于冰上融化），冰浴30分鐘。

   注意：用化學法轉化時，連接產物的加入量不要超過感受態細胞體積的10%。

5．42℃熱擊45秒鐘，迅速將離心管轉移到冰浴中，冰上靜置2-3分鐘。

6．加入450 μl無菌SOC或LB培養基，混勻后置于37℃搖床，150 rpm振蕩培養45分鐘，

   使菌體復蘇。

7．根據實驗要求，取適量已轉化的感受態細胞，加到含有X-Gal、IPTG和Amp的LB固體

   培養基上，用無菌的涂布棒將細胞均勻涂開，將平板置于37℃，直至液體被吸收后，

   倒置培養，37℃培養12-16小時。

8．計算白、藍色菌落，挑選白色菌落，使用PCR法或酶切法鑒定插入片段是否正確。

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